Typologie Des Gites Larvaires Et Sensibilite D’anopheles Gambiae S.L. Aux Insecticides En Zone Urbaine, Peri-Urbaine Et Rurale A Oyem (Nord Du Gabon)

Pyazzi Obame  Ondo Kutomy; Christophe  Roland Zinga-Koumba; Aubin  Armel Koumba; Silas  Lendzele Sevidzem; Jacques  François Mavoungou; Ousmane  Faye

doi:10.19044/esj.2022.v18n17p22

Pyazzi Obame Ondo Kutomy Laboratoire d’Ecologie Vectorielle et Parasitaire (LEVP), Université Cheikh Anta Diop de Dakar (UCAD), Dakar, Sénégal Programme National de Lutte contre le Paludisme (PNLP), Libreville, Gabon
Christophe Roland Zinga-Koumba Laboratoire d’Ecologie Vectorielle (LEV), Institut de Recherche en Ecologie Tropicale (IRET), Centre National de la Recherche Scientifique et Technologique, Libreville, Gabon Agence Nationale des Parcs Nationaux (ANPN), Libreville, Gabon
Aubin Armel Koumba Laboratoire d’Ecologie Vectorielle (LEV), Institut de Recherche en Ecologie Tropicale (IRET), Centre National de la Recherche Scientifique et Technologique, Libreville, Gabon. Faculté des Sciences et Techniques, Université d’Abomey-Calavi, Bénin
Silas Lendzele Sevidzem Laboratoire d’Ecologie Vectorielle (LEV), Institut de Recherche en Ecologie Tropicale (IRET), Centre National de la Recherche Scientifique et Technologique, Libreville, Gabon
Jacques François Mavoungou Laboratoire d’Ecologie Vectorielle (LEV), Institut de Recherche en Ecologie Tropicale (IRET), Centre National de la Recherche Scientifique et Technologique, Libreville, Gabon
Ousmane Faye Laboratoire d’Ecologie Vectorielle et Parasitaire (LEVP), Université Cheikh Anta Diop de Dakar (UCAD), Dakar, Sénégal

DOI: https://doi.org/10.19044/esj.2022.v18n17p22

Keywords: Breeding sites, mosquitoes, Anopheles gambiae s.l.

Abstract

Contexte : Les gîtes de développement des moustiques vecteurs et leur niveau de sensibilité aux insecticides ne sont pas connus à Oyem.

Objectif : Caractériser les gîtes de reproduction des populations de moustiques d‘Oyem et évaluer leur sensibilité aux insecticides utilisés en santé publique.

Matériel et méthodes : Des prospections et des collectes larvaires ont été menées en juillet 2020 (saison sèche) et de mi-novembre à mi-décembre 2020 (saison pluvieuse) dans la localité d’Oyem suivant un gradient d’anthropisation. De plus, les moustiques obtenus après émergence ont été testés au DDT 4%, à la Deltaméthrine 0,05%, à la Perméthrine 0,75%, à la Lambdacyalothrine 0,05%, à la Cyfluthrine 0,15%, au Bendiocarb 0,1% et au Malathion 5% selon le protocole standardisé de l’OMS de 2017.

Résultats : Un total de 498 gîtes larvaires a été identifié dans la région d’Oyem. Ces gîtes étaient constitués de 24,9% de récipients domestiques (fûts, seaux, bidons, bassines, etc.), de pneus usés (18,2%), de marécages (9,4%), de flaques d’eau (42,2%), de lacs (1,4%), de rivières (1,6%), de caniveaux (1,4%) et de fosses septiques (1%). Près de 21 217 larves ont été collectées dont 59% appartenaient au genre Culex, 35% à Anopheles et 9% à Aedes. Dans la zone urbaine, les larves de Culex étaient les plus fréquentes (84,9%) et celles d’Aedes les moins rencontrées (4,5%). Cependant, dans la zone péri-urbaine, ce sont les larves d’Anopheles qui étaient les mieux représentées (64%) et les larves d’Aedes les moins collectées (2,9%). Enfin, dans la zone rurale, ce sont les larves de Culex qui ont été les plus récoltées (45,3%) et celles d’Aedes les moins observées (12,7%). Les résultats des bioéssais ont révélé que les populations d’Anopheles gambiae s.l. de la région d’Oyem sont résistantes au DDT, à la Deltaméthrine, à la Perméthrine, à la Lambdacyalothrine et à la Cyfluthrine, mais, sensibles au Bendiocarb et au Malathion.

Conclusion : Bien que les anophèles d’Oyem soient déjà résistants aux Organochlorés et Pyréthrinoïdes, ils demeurent encore sensibles aux Carbamates et Organophosphorés. Ces deux familles d‘insecticides pourraient être utilisées en pulvérisation intradomiciliaire à Oyem. Toutefois, la recherche des mécanismes à l’origine de ces résistances constatées chez les moustiques d‘Oyem est nécessaire pour confirmer ou infirmer les résultats obtenus au cours des bioessais.

Background: The development sites of mosquito vectors and their sensitivity level to insecticides are not known in Oyem.

Objective: To characterize the mosquito breeding sites in Oyem and to assess their sensitivity to insecticides used in public health.

Materials and methods: Larval surveys and collections were conducted in July 2020 (dry season) and from mid-November to mid-December 2020 (rainy season) in the locality of Oyem following an anthropization gradient. Moreover, mosquitoes obtained after emergence were tested with DDT 4%, Deltamethrin 0.05%, Permethrin 0.75%, Lambdacyalothrin 0.05%, Cyfluthrin 0.15%, Bendiocarb 0.1% and Malathion 5% according to the 2017 WHO standardized protocol.

Results: A total of 498 breeding sites was identified in the Oyem region. These larval habitats consisted of 24.9% of domestic containers (barrels, buckets, cans, basins, etc.), used tires (18.2%), swamps (9.4%), puddles (42.2%), lakes (1.4%), rivers (1.6%), gutters (1.4%) and septic tanks (1%). About 21,217 larvae were collected, 59% of which belonged to the genus Culex, 35% to Anopheles and 9% to Aedes. In urban area, Culex larvae were the most frequent (84.9%) and Aedes larvae were the least encountered (4.5%). However, in the peri-urban area, Anopheles larvae were the best represented (64%) and Aedes larvae were the least collected (2.9%). Finally, in the rural area, Culex larvae were the most harvested (45.3%) and Aedes larvae the least observed (12.7%). The results of the bioassays revealed that populations of Anopheles gambiae s.l. in the Oyem region are resistant to DDT, Deltamethrin, Permethrin, Lambdacyalothrin and Cyfluthrin.

Conclusion: Although Anopheles in Oyem are already resistant to Organochlorines and Pyrethrinoids, they are still sensitive to Carbamates and Organophosphates. These two families of insecticides could be used for indoor residual spraying in Oyem. However, research into the mechanisms behind the resistance observed in mosquitoes from Oyem is necessary to confirm or refute the bioassay results.

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References

1. Akono Ntonga, P., Mbida Mbida, A., Awono Ambene, P., Youmbi Enga, L., Kayoum, Y. A., & Kekeunou, S. (2018). Habitats larvaires et sensibilité des vecteurs du paludisme aux insecticides dans des localités (semi-urbaine et rurale) de la région du littoral camerounais : Données préliminaires. Revue d’Ecologie (Terre Vie), 73 (2), 132-141.
2. Almeida, J. F., Belchior, H. C. M., Rios-Velasquez, C. M., & PESSOA, F. A. C. (2020). Diversity of mosquitoes (Diptera: Culicidae) collected in different types of larvitraps in an amazon rural settlement. Plos One, 15 (10), 1-15.
3. Antonio-Nkondjio, C., Tene Fossog, B., Kopya, E., Poumachu, Y., Menze, B., Ndo, C., Tchuinkam, T., Awono-Ambene, P., & Wondji, C. S. (2015). Rapid evolution of pyrethroid resistance prevalence in Anopheles gambiae populations from the cities of Douala and Yaoundé (Cameroon). Malaria Journal, 14, 155.
4. Antonio-Nkondjio, C., Sonhafouo-Chiana, N., Ngadjeu, C. S., Doumbe-Belisse, P., Talipouo, A., Djamouko-Djonkam, L., Kopya, E., Bamou, R., Awono-Ambene, P., & Wondji, C. S. (2017). Review of the evolution of insecticide resistance in main malaria vectors in Cameroon from 1990 to 2017. Parasites & Vectors, 10, 472-486.
5. Baldacchino, F., & Paupy, C. (2010). Clé de détermination des Culicidae présents en Afrique Centrale et au Gabon. Document de travail, IRD/CIRMF, 108p.
6. Baldet, T. (1995). Étude comparative de deux stratégies de lutte contre Culex quinquefasciatus Say, 1823 par Bacillus sphaericus Neide, 1904 dans la ville de Maroua (Nord-Cameroun). Thèse de Doctorat, Université de Montpellier, France, 376p.
7. Carnevale, P., & Mouchet, J. (2001). La lutte antivectorielle au Cameroun, Passé, présent et avenir : Réflexions. Bulletin de la Société de Pathologie Exotique, 94, 202-9.
8. Carnevale, P., & Robert, V. (2009). Les anophèles : biologie, transmission du plasmodium et lutte antivectorielle. Didactiques, Marseille.
9. Clements, A. (1963). The physiology of mosquitoes. Pergamon Press, Oxford & New York.
10. Coetzee, M. (2020). Key to the females of Afrotropical Anopheles mosquitoes (Diptera: Culicidae). Malaria Journal, 19, 70, https://doi.org/10.1186/s12936-020-3144-9. Licence CC BY 4.0.
11. Dambach, P., Sie, A., Lacaux, J. P., Vignolles, C., Machault, V., & Sauerborn, R. (2009). Using high spatial resolution remote sensing for risk mapping of malaria occurrence in the Nouna district, Burkina Faso. Global Health Action, 2 (0) (2009) 1-7. DOI: 10.3402/gha.v2i0.2094.
12. DGS-RGPL (Direction Générale de la Statistique du Gabon-Recensement Général de la Population et des Logements) (2015), Résultats globaux du Recensement Général de la Population et des Logements de 2013 « RGPL ») du Gabon. Ministère de l’Economie, de la Promotion des Investissements et de la Prospective, Libreville, Gabon, 247p.
13. Djegbe, I., Toponon, T. F., Gbankoto, A., Tchigossou, G., Djossou-Hessou, D., Dossou, C., Yessoufou, A., Akogbéto, M., Djogbénou, L., & Djouaka, R. (2019). Typologie des gîtes larvaires et résistance des vecteurs du paludisme à la deltaméthrine dans les milieux urbain et rural du Département de l’Atlantique au Sud du Bénin: Données préliminaires. European Scientific Journal, 15 (33), 171-191.
14. Djogbenou, L., Pasteur, N., Akogbeto, M., Weill, M., & Chandre, F. (2011). Insecticide resistance in the Anopheles gambiae complex in Benin: a nationwide survey. Medical and Veterinary Entomology, 25, 256–267.
15. Duvallet, G., Fontenille, D., & Robert, V. (2017). Entomologie médicale et vétérinaire. IRD Editions, Edtions Quae, Marseille, Versailles, 688p.
16. Egbuche, C. M., Ezihe, C. K., Aribodor, D. N., & Ukonze, C. B. (2016). Survey of mosquitoes in open and closed larval habitats in Aguleri, Anambra East Local Government Area of Anambra State, South Eastern Nigeria. Journal of Mosquito Research, 6 (17), 1-5.
17. Etang, J., & Simard, F. (2002). Résistance d’Anopheles gambiae s.l. aux insecticides. In : Résistance des insectes aux insecticides en Afrique de l’ouest et du centre. Actes de l’atelier, 06- 07 mars 2002, Maroua, Cameroun: Volume 1 : résumés et recommandations, Volume 2 : communications et présentations, Brévault Thierry (ed.), Nibouche Samuel (ed.), CIRAD, PRASAC, IRAD.
18. FONDS MONDIAL (2008). Evaluation finale Quatrième Round de lutte contre le Sida, la Tuberculose et le Paludisme « Composante Paludisme » Gabon. Fonds Mondial, 44p.
19. Hayett, B., Fouzia, D., & Noureddine, S. (2012). Étude systématique et écologique des moustiques (Diptera: Culicidae) dans la région de Tébessa (Algérie). Entomologie Faunistique, 65, 99-103.
20. Himmi, O. (2007). Les culicidés (Insectes, diptères) du Maroc : Systématique, écologie et études épidémiologiques pilotes. Thèse de Doctorat d’Etat, Faculté des Sciences de Rabat, Université Mohamed V, Maroc, 363p.
21. Imboumy-Limoukou, R. K., Maghendji-Nzondo, S., Sir-Ondo-Enguier, P. N., Niemczura De Carvalho, J., Tsafack-Tegomo, N. P., Buekens, J., Okouga, A. P., Mouinga-Ondeme, A., Kwedy Nolna, S., & Lekana-Douki, J. B. (2020). Malaria in children and women of childbearing age: infection prevalence, knowledge and use of malaria prevention tools in the province of Nyanga, Gabon. Malaria Journal, 19, 387-394.
22. Kamdem, C., Tene Fossog, B., & Simard, F. (2012). Anthropogenic habitat disturbance and ecological divergence between incipient species of the malaria mosquito Anopheles gambiae. PLos One, 7(6), e39453.
23. Kamgang, B., Tchapga, W., Ngoagouni, C., Sangbakembi- Ngounou, C., Wondji, M., Riveron, J. M., & Wondji, C. S. (2018). Exploring insecticide resistance mechanisms in three major malaria vectors from Bangui in Central African Republic. Pathogens and Global Health, 112 (7), 349–359.
24. Kbibch, A., Elkharim, K., & Elkhokh, K. (2012). Etude de l’impact des eaux usées de la ville de Souk el Arbaa sur la prolifération des moustiques (Culex pipiens). Science Lib, 4, 120603.
25. Kone, A. B., Konan, Y. L., Coulibaly, Z. I., Fofana, D., Guindo-Coulibaly, N., Diallo, M., Doannio, J. M. C., Ekra, K. D., & Odehouri-Koudou, P. (2013). Evaluation entomologique du risque d’épidémie urbaine de fièvre jaune survenue en 2008 dans le district d’Abidjan, Côte d’Ivoire. Médecine et Santé Tropicales, 23(1), 66-71. https://doi.org/10.1684/mst.2013.0153.
26. Korba, R. A., Alayat, M. S., Bouiba, L., Boudrissa, A., Bouslama, Z., Boukraa, S., Francis, F., Failloux, A. B., & Boubidi, S. C. (2016). Ecological differentiation of members of the Culex pipiens complex, potential vectors of West Nile virus and Rift Valley fever virus in Algeria. Parasites & Vectors, 9, 455-465. DOI: 10.1186/s13071-016-1725-9.
27. Koumba, A. A., Zinga Koumba, C. R., Mintsa Nguema, R., Djogbenou, L. S., Comlan, P., Gneingui, M. P., Ketoh, G. K., M’batchi, B., & Mavoungou, J. F. (2018b). Détermination de la sensibilité d’Anopheles gambiae s.l. à quelques pyréthrinoïdes dans les zones élaéicoles à Mouila (Gabon). International Journal of Innovation and Scientific Research, 39(2), 110-119.
28. Koumba, A. A., Zinga Koumba, C. R., Mintsa Nguema, R., Obame Ondo, P., Bibang Bengono, G., Comlan, P., Ketoh, G. K., Djogbenou, L. S., Faye, O., M’batchi, B., & Mavoungou, J. F. (2018a). Susceptibilité d’Anopheles gambiae s.s. et An. coluzzii aux organophosphorés et aux carbamates en zones d’exploitation industrielle de palmiers à huile à Mouila, Gabon. Bulletin de la Société de Pathologie Exotique, 111, 176-182.
29. Koumba, A. A., Zinga-Koumba, C. R., Mintsa-Nguema, R., Ketoh, G. K., Djogbenou, L. S., & Mavoungou, J. F. (2020). Identification et caractérisation des gîtes larvaires des moustiques en saison sèche à la périphérie de la ville de Mouila, Sud du Gabon. Afrique SCIENCE, 16(2), 192-205.
30. Koumba, A. A., Zinga-Koumba, C. R., Mintsa-Nguema, R., Djogbenou, L. S., Obame Ondo, P., Ketoh, G. K., Comlan, P., M’batchi, B., & Mavoungou, J. F. (2018c). Distribution spatiale et saisonnière des gîtes larvaires des moustiques dans les espaces agricoles de la zone de Mouila, Gabon. International Journal of Biological and Chemical Sciences, 12(4), 1754-1769.
31. Mahamane Iro, S., Alpha Seydou, Y., & Doumma, A. (2020). Mesures des indicateurs de prolifération des larves de moustiques au niveau des mares permanentes et semi permanentes de Saga, Niger. International Journal of Biological and Chemical Sciences, 14(4), 1188-1202.
32. Mbida Mbida, A., Etang, J., Akono Ntonga, P., Eboumbou Moukoko, C., Awono-Ambene, P., Tagne, D., Talipouo, A., Ekoko, W., Binyang, J., Tchoffo, R., Lehman, G., Mimpfoundi, R. (2017). Nouvel aperçu sur l’écologie larvaire d’Anopheles coluzzii Coetzee et Wilkerson, 2013 dans l’estuaire du Wouri, Littoral-Cameroun. Bulletin de la Société de Pathologie Exotique, 110, 92-101.
33. MDDEPIP (2015). Notice d’impact environnemental et social (NIES) du projet concernant les travaux de pavage de 1800 mètres de voirie urbaine dans le quartier Nkomoyat (Oyem). Rapport final du Projet de Développement des Infrastructures Locales, Ministère du Développement Durable, de l’Economie de la Promotion des Investissements et de la Prospective, 74p.
34. MINSANTE-SNIS (2018). Carte sanitaire 2017. Ministère de la Santé de la République Gabonaise, Libreville, Gabon, 215p.
35. Mourou, J. R., Coffinet, T., Jarjaval, F., Pradines, B., Amalvict, R., Rogier, C., Kombila, M., & Pages, F. (2010). Malaria transmission and insecticide resistance of Anopheles gambiae in Libreville and Port-Gentil, Gabon. Malaria Journal, 9(32), 1-8.
36. Muturi, E., Shililu, J., Gu, W., Jacob, B., Githure, J., & Novak, R. (2007). Larval habitat dynamics and diversity of Culex mosquitoes in rice agro-ecosystem in Mwea, Kenya. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 76, 95-102.
37. N’do, S., Bandibabone, J. B., Soma, D. D., Musaka, B. Z., Prudhomme, J., Habamungu, C. C., Namountougou, M., Sangare, I., Kientega, M., Kabore, D. A. P., Bayili, K., Yerbanga, R. S., Diabate, A., Dabire, R. K., Ouedraogo, J. B., Belem, A. M. G., Boëte, C., Guardiola-Claramonte, M., & Chimanuka B. (2021). Insecticide resistance proﬁles in malaria vector populations from Sud-Kivu in the Democratic Republic of the Congo. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, 0, 1–6.
38. Nasr, N., Delpech, B., Flitner, N., Hulshof, M., Torreilles, J. C., & Twagiramungu, F. (1995). Quelle agriculture vivrière pour le nord du Gabon? Agriculture et développement, N.8.
39. Obame Ondo Kutomy, P., Zinga Koumba, C. R., Mbang Nguema, O. A., Sembene, P. M., & Mavoungou, J. F. (2014). Inventaire des mouches hématophages dans les élevages bovins, ovins et porcins à Oyem (Nord Gabon). Afrique SCIENCE, 10(2), 373–381.
40. OMS (2017). Procédure pour tester la résistance aux insecticides chez les moustiques vecteurs du paludisme, seconde édition. Organisation Mondiale de la Santé, Genève, 48p.
41. Pinto, J., Lynd, A., Elissa, N., Donnelly, M. J., Costa, C., Gentile, G., Caccone, A., & Do Rosario, V. E. (2006). Co-occurrence of East and West kdr mutations suggests high levels of resistance to pyrethroid insecticides in Anopheles gambiae from Libreville, Gabon. Medical and Veterinary Entomology, 20, 27-32.
42. PNUD (Programme des Nations Unies pour le développement) (2009). Programme ART GOLD GABON, Document de Marketing-Province du Woleu-Ntem, 60p.
43. PRODIAG (2012). Projet de Développement et d’Investissement Agricole au Gabon, 76p.
44. Talipouo, A., Ntonga Akono, P., Tagne, D., Mbida Mbida, A., Etang, J., Tchoffo Fobasso, R., Ekoko, W., Binyang, J., & Dongmo, A. (2017). Comparative study of Culicidae biodiversity of Manoka island and Youpwe mainland area, Littoral, Cameroon. International Journal of Biosciences, 10(4), 9-18.
45. Tia, E., Konan, K. G., Ouassa, B. A. M., Moussa, K., Tea, S. A. R., Koffi, B., & Kadjo, K. (2016). Evaluation au laboratoire de l’efficacité de la peinture insecticide acrylique titan® contre Anopheles gambiae, vecteur majeur du paludisme en Côte d’Ivoire. European Scientific Journal, 12(12), 309-321.
46. WHO (2016). World malaria report 2016. World Health Organization, Geneva, Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO, 186p.
47. WHO (2019). World malaria report 2019. World Health Organization, 2019, Geneva, 232p.
48. Zogo, B. A., Koffi, A., Ahoua Alou, P., Koné Aboubacar, L., Dosso, Y., Coulibaly, I., Fournet, F., Dahounto A., Kounbobr Dabiré, R., Baba-Moussa, L., Moiroux, N., & Pennetier, C. (2019). Identification and characterization of Anopheles spp. breeding habitats in the Korhogo area in northern Côte d’Ivoire: a study prior to a Bti-based larviciding intervention. Parasites Vectors, 12, 146. Doi: 10.1186/s13071-019-3404-0.