Teneur en Composés Phénoliques et Activités Antioxydantes de Sargassum fluitans et Sargassum natans, deux Algues Brunes Invasives des Côtes Ivoiriennes

Aboubacar Ouattara; Konan Yao; Koffi Komoe; Wokapeu Blaise Kpan; Mamidou Witabouna Kone; Djakalia Ouattara; Sadibou Toure

doi:10.19044/esj.2022.v18n33p313

Aboubacar Ouattara Laboratoire des Milieux Naturels et Conservation de la Biodiversité, UFR Biosciences, Université Félix Houphouët-Boigny, Côte d’Ivoire
Konan Yao Laboratoire des Milieux Naturels et Conservation de la Biodiversité, UFR Biosciences, Université Félix Houphouët-Boigny, Côte d’Ivoire Laboratoire des systématiques Herbiers et Musée Botanique, Centre National de Floristique (CNF), UFR Biosciences, Université Félix Houphouët-Boigny, Côte d’Ivoire Centre Suisse de Recherches Scientifiques en Côte d'Ivoire (CSRS), Côte d’Ivoire
Koffi Komoe Laboratoire des Milieux Naturels et Conservation de la Biodiversité, UFR Biosciences, Université Félix Houphouët-Boigny, Côte d’Ivoire
Wokapeu Blaise Kpan Laboratoire des Milieux Naturels et Conservation de la Biodiversité, UFR Biosciences, Université Félix Houphouët-Boigny, Côte d’Ivoire Laboratoire des systématiques Herbiers et Musée Botanique, Centre National de Floristique (CNF), UFR Biosciences, Université Félix Houphouët-Boigny, Côte d’Ivoire
Mamidou Witabouna Kone Centre Suisse de Recherches Scientifiques en Côte d'Ivoire (CSRS), Côte d'Ivoire Laboratoire de Botanique et Valorisation de la Diversité végétale, UFR Sciences de la Nature, Université Nangui Abrogoua, Côte d’Ivoire
Djakalia Ouattara Laboratoire des Milieux Naturels et Conservation de la Biodiversité, UFR Biosciences, Université Félix Houphouët-Boigny, Côte d’Ivoire Laboratoire des systématiques Herbiers et Musée Botanique, Centre National de Floristique (CNF), UFR Biosciences, Université Félix Houphouët-Boigny, Côte d’Ivoire
Sadibou Toure Centre Suisse de Recherches Scientifiques en Côte d'Ivoire (CSRS), Côte d'Ivoire

DOI: https://doi.org/10.19044/esj.2022.v18n33p313

Keywords: Algues brunes ; Sargassum fluitans ; Sargassum natans ; composés phénoliques ; activités antioxydantes ; Côte d’Ivoire

Abstract

Sargassum fluitans (Børgesen) Børgesen et Sargassum natans (Børgesen) Børgesen (Sargassaceae) sont deux algues brunes invasives qu’on retrouve dans les eaux et sur les plages du golfe de Guinée, notamment celles de la Côte d’Ivoire. L’objectif de cette étude est de contribuer à la lutte contre la pollution environnementale des sargasses sur les plages ivoiriennes à travers une valorisation de ces algues en additifs alimentaires en aviculture et en cuniculture. Ainsi, la teneur des deux algues en composés phénoliques ainsi que leurs pouvoirs antioxydants ont été évalués. On note une bonne teneur en polyphénols totaux avec les extraits aqueux avec des valeurs de 378,30 ± 0,59 mg/100 g et 549,39 ± 0,00 mg/100 g respectivement pour SF et SN. Au niveau des phlorotannins, on a des teneurs qui varient entre 93,18 ± 1,46 mg/100g et 36,37 ± 0,58 mg/100g selon le solvant utilisé. L’activité antiradicalaire contre le radical ABTS a donné des valeurs moyennes de 3,89 ± 2,28 mg/mL avec SFEth et 3,21 ± 2,29 mg/mL pour SNH2O. Ces résultats obtenus indiquent que Sargassum fluitans (SF) et Sargassum natans (SN) renferment des composés phénoliques et ont des activités antioxydantes intéressantes susceptibles d’encourager vers leur valorisation en tant qu’additifs alimentaires aux pouvoirs immunogènes chez les poulets de chairs (Gallus gallus domesticus) et les lapins (Oryctolagus cuniculus).

Sargassum fluitans (Børgesen) Børgesen and Sargassum natans (Børgesen) Børgesen (Sargassaceae) are two invasive brown algae found in the waters and on the beaches of the Gulf of Guinea, particularly those of Côte d'Ivoire. The objective of this study is to contribute to the fight against the environmental pollution of Sargassum on Ivorian beaches through the valorization of these algae in food additives in poultry farming and rabbit farming. Thus, the content of the two seaweeds in phenolic compounds as well as their antioxidant powers were evaluated. A good content of total polyphenols is noted with the aqueous extracts with values of 378.30 ± 0.59 mg/100g and 549.39 ± 0.00 mg/100g respectively for SF and SN. The phlorotannins contents varied between 93.18 ± 1.46 mg/100g and 36.37 ± 0.58 mg/100g depending on the solvent used. The antiradical activity against the ABTS radical gave average values of 3.89 ± 2.28 mg/mL with SFEth and 3.21 ± 2.29 mg/mL for SNH2O. The results obtained show that Sargassum fluitans (SF) and Sargassum natans (SN) contain phenolic compounds and have interesting antioxidant activities likely to encourage their development as food additives with immunogenic powers in broiler chickens (Gallus gallus domesticus) and rabbits (Oryctolagus cuniculus).

Downloads

Download data is not yet available.

Metrics

Metrics Loading ...

PlumX Statistics

References

1. Aka K. S., Sankare Y., Komoé K. & N’cho A. J. (2018). Influence des algues sargasses (sargassum fluitans, sargassum natans) sur les activités socio-économiques le long du littoral ivoirien ﴾Côte d’Ivoire -Afrique de l’ouest﴿. Revue Canadienne de Géographie Tropicale, 5 (2) : 10-15.
2. Alzate-Gaviria L., Domínguez-Maldonado J., Chablé-Villacís R. C., Olguin-Maciel E., Leal-Bautista R. M., Canché-Escamilla G., Caballero-Vázquez A., Hernández-Zepeda C., Felipe Alonso Barredo-Pool F. A. & Tapia-Tussell R. (2021). Presence of Polyphenols Complex Aromatic “Lignin” in Sargassum spp. from Mexican Caribbean. Journal of Marine Science and Engineering, 9 (6) : 1-10 .
3. Ba K., Tine E., Destain J., Cissé N. & Thonart P. (2010). Étude comparative des composés phénoliques, du pouvoir antioxydant de différentes variétés de sorgho sénégalais et des enzymes amylolytiques de leur malt. Biotechnologie, Agronomie, Société et Environnement, 14 (1) :131-139.
4. Bahorun T., Gressier B., Trotin F., Brunet C., Dine T., Luyckx M. & Pinkas M. (1996). Oxygen species scavenging activity of phenolic extracts from hawthorn fresh plant organs and pharmaceutical preparations. Arzneimittel-forschung, 46 (11) : 1086-1089.
5. Bidié A.P., N’guessan B.B., Yapo A. F., N’guessan J.D. & Djaman A. J. (2011). Activités antioxydantes de dix plantes médicinales de la pharmacopée ivoirienne. Sciences et Nature, 8 (1) : 1-11.
6. Bouvier E. (2020). Mise en valeur des résidus d’algues sargassum en contexte d’échouage massif dans les Antilles. Maitrise en environnement, Université de Sherbrooke, 81 p.
7. Bruneton J. 2008. Pharmacognosie, Phytochimie, Plante médicinales. Editions Lavoisier Technique & Documentation, 3ème édition, Paris, 783-785 p.
8. Creis, E., E. A. Gall et P. Potin. 2018. Ubiquitous phlorotanins prospects and perspectives. In Blue Biotechnology: Production and Use of Marine Molecules, 67-116.
9. Desrochers A., Cox S-A., Oxenford H. A. & van Tussenbroek B. (2020). Guide sur les utilisations des sargasses : une ressource pour les chercheurs, les entrepreneurs et les responsables politiques des Caraïbes. Rapport financé par et préparé pour le projet Adaptation au changement climatique du secteur de la pêche dans les Caraïbes orientales (CC4FISH) de l'Organisation des Nations Unies pour l'alimentation et l'agriculture (FAO). Centre pour la gestion des ressources et les études environnementales (CERMES), Université West Indies, campus de Cave Hill. Bridgetown : Barbade. Rapport technique CERMES n°97, 201 p.
10. Diomande A., Yao K., Sylla Y., Tra Bi F. H., Bakayoko A. & Koné M. W. (2018). Pouvoir antioxydant et teneurs en composés phénoliques de deux espèces du genre Albertisia : Albertisia cordifolia (Mangenot & J. Miège) Forman et Albertisia scandens (Mangenot & J. Miège) Forman (Menispermaceae). European Scientific Journal, 14 (32) : 1857-7881.
11. Florenne T., Guerber F. & Colas-Belcour F. (2016). Le phénomène d’échouage des sargasses dans les Antilles et en Guyane. Rapport, 406 p.
12. Franks, J. S., Johnson D. R. & Ko. D. S. (2016). Pelagic Sargassum in the Tropical North Atlantic. Gulf and Caribbean Research, 27 (1): 6-11. DOI: https://doi.org/10.18785/gcr.2701.08.
13. Guiry M. D. & Guiry G. M. (2013). Algae Base version 4.2. World-wide electronic publication, National University of Ireland, Galway, http://www.algaebase.org, consulté le 17/05/ 2020.
14. Johnson D. R., Franks J. S., Ko D. S., Moreno P. & Sanchez-Rubio G. (2012). Sargassum Invasion of the Eastern Caribbean and West Africa 2011: Hypothesis Center for Fisheries Research and Development Gulf Coast Research Laboratory University of Southern Mississippi U.S. Naval Research Laboratory- Stennis Space Center, Mississippi. Gulf Caribbean Fisheries Institute, 65: 102–103.
15. Komoé K., Sankare Y., Fofie N. B. Y., Bamba A. & Sahra G. (2016). Taxonomic study of two species of Sargassum: Sargassum fluitans (Børgesen) Børgesen and Sargassum natans (Linnaneus) Gaillon (brownalgae) collected in Côte d’Ivoire coasts, West Africa. Nature and Science, 14 (10) : 50-56.
16. Konan A. G., Yao K.  Koné. M. W. (2015). Polyphenols content and antioxidant capacity of traditional juices consumed in Côte d’Ivoire. Journal of Applied Biosciences, 87 : 8015- 8021.
17. Bené K., Camara D., Kanga Y. & Zirihi G. N. (2017). Potentiel antiradicalaire des extraits de feuilles de Bersama abyssinica Fresen. (Melianthaceae). International Journal of Biological Chemical Sciences, 11 (6): 2962-2970.
18. Kouassi K. A., Kouadio N. J., Ahoua A. R. C., Yao K., Kanga Y., Moya B. G. & Koné M. W. (2020). Activité antioxydante et teneur en flavonoïdes de cinq plantes de la famille des Fabaceae utilisées contre l’ostéoporose au centre de la Côte d’Ivoire. European Scientific Journal, 16 (3) : 1857 – 7881
19. Maréchal J. P., Hellio C. & Hu C. (2017). A simple, fast, and reliable method to predict Sargassum washing ashore in the Lesser Antilles. Remote Sensing Applications : Society and Environment, 5 : 54‐63.
20. Le Lann K. 2009. Etude de la biodiversité des Sargassaceae (Fucales, Phaeophyceae) en milieux tempéré et tropical : écologie, chimio-taxonomie et source de composes bioactifs. Thèse de doctorat : Université de Bretagne occidentale, 367 p.
21. Mélissa C. (2015). Analyse de la composition chimique d’algues, d’aliments et de produits animaux. Chimie. Brevet de Tecnicien Supérieur Chimiste de l’unité de recherche zootechnique de l’INRA, Gouadeloupe. 35 p.
22. Meenakshi S., Gnanambigai D. M, Mozhi S. T., Arumugam M. & Balasubramanian T. 2009. Total flavanoid and in vitro antioxidant activity of two seaweeds of Rameshwaram coast. Global Journal of Pharmacology, 3 : 59-62.
23. Milledge J. J., Maneein S., Arribas López E. & Bartlett D. (2020). Sargassum inundations in Turks and Caicos: methane potential and proximate, ultimate, lipid, amino acid, metal and metalloid analyses. Energies, 13 (1523) :1-27.
24. Ouattara A., Kpan W. B., Ouattara D., Koné M. W. & Komoé K. (2021). The acute toxicity of Sargassum fuiltans (Børgesen) Børgesen and Sargassum natans (Børgesen) Børgesen on some rats of wistar stock. Journal of Animal & Plant Sciences, 47 (3) : 8542-8551.
25. Oyaizu M. (1986). Studies on products of browning reaction. The Japanese journal of nutrition and dietetics, 44 (6) : 307-315.
26. Oyesiku O.O. & Egunyomi A. (2014). Identification and chemical studies of pelagic masses of Sargassum natans (Linnaeus) Gaillon and Sargassum fluitans (Borgessen) Borgesen (brown algae), found offshore in Ondo State, Nigeria. African Journal of Biotechnology, 13 (10) : 1188-1193.
27. Plouguerné E, Le Lann, K., Connan, S., Jechoux, G., Deslandes, E. & Stiger-Pouvreau V.
28. (2006). Spatial and seasonal variation in density, reproductive status, length and phenolic content of the invasive brown macroalga Sargassum muticum (Yendo) Fensholt along the coast of Western Brittany (France). Aquatic. Botany, 85 :337-344.
29. Plouguerné E., Hellio C., Deslandes E., Véron B., Bremer G. & Stiger-Pouvreau V. (2008). Anti-microfouling activities in extracts of two invasive algae: Grateloupia turuturu and Sargassum muticum. Botanica Marina, 51 : 202-208.
30. Sankaré Y, Komoé K, Aka KS, Fofié NBY. & Bamba A. (2016). Répartition et abondance des sargasses Sargassum natans et Sargassum fluitans (Sargassaceae, Fucales) dans les eaux marines ivoiriennes (Afrique de l’Ouest). International Journal of Biological and Chemical Sciences, 10(4) : 1853-1864.
31. Sarojini Y., Lakshminarayana K. & Seshagiri R. P. 2012.Variations in distribution of flavonoids in some seaweed of Visakhapatnam coast of India. Der Pharma Chemica. 4(4) : 1481- 1484. Sava. C. & Sirbu R. 2010. Ovidius University Annals of Chemistry, 21: 29-34.
32. Singleton V. L. & Rossi J. A. (1965). Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American journal of Enology and Viticulture, 16 (3) : 144-158.
33. Stiger-Pouvreau V., Jégou C., Cérantola S., Guérard F. & Le Lann K. (2014). Phlorotannins in Sargassaceae species from Brittany (France): Interesting molecules for ecophysiological and valorization purposes. In: Bourgougnon, N. (Ed.), Adv Bot Res: Sea Plants Elsivier, Oxford, pp. 379–411.
34. Thouri A., Chahdoura H., El Arem A., Omri H., A., Ben H. R. & Achour L. 2017. Effet of solvents extraction on phytochemical components and biological activities of Tunisian date seeds (var. Korkobbi and Arechti). BMC complementary and alternative medicine, 17 (1) : 248.
35. Wijesinghe W. A. J. P. & Jeon Y. J. (2011). Biological activities and potential cosmeceutical applications of bioactive components from brown seaweeds: a review. Phytochemistry Reviews, 10 (3):431-443.
36. Wangcharoen W. & Morasuk W. (2007). Antioxidant capacity and phenolic content of some Thaiculinary plants. Maejo International Journal of Science and Technology, 1 (2) : 100-106.